TP proposé par lycée La Martinière Duchère, Lyon (69)
- Matériel nécessaire
- ZnSO4 : 1 mg
- H3BO3 : 1 mg
- MnSO4 : 0,1 mg
- CuSO4 : 0,03 mg
- KCl : 0,01 mg
- Réalisation de la culture
– Première étape : préparation du plan de travail.- Nettoyer puis passer à l’eau de Javel la zone de travail ainsi que le bec Bunsen qui sera mis au centre de la zone stérile.
- Déposer tout le matériel stérile autour du bec Bunsen.
- Allumer le bec Bunsen.
- Se laver les mains et les avant-bras au savon.
– Deuxième étape : désinfection des explants.
- Prélever une grande portion de tige, la plonger 20 s dans l’alcool puis 10 min dans de l’eau de Javel ou le domestos et enfin la rincer dans trois eaux distillées différentes (5 min chaque fois).
– Troisième étape : préparation des explants.
- Mettre la portion de tige dans la boîte de Pétri, la couper en tronçons portant chacun un bourgeon axillaire en repérant bien la base et le sommet de chacun d’eux.
– Quatrième étape : mise en culture.
- Introduire les tronçons préparés dans le flacon contenant le milieu de culture.
- Placer le flacon de culture à 25 C environ, devant une fenêtre.
- Pistes d’utilisation
– Besoins nutritifs des végétaux.
– Amélioration de la production végétale.
– Suivi du développement d’un végétal.
– Germe ou tout simplement un oeil de pomme de terre.
– Flacons contenant les milieux de stérilisation : alcool à 70, eau de Javel diluée ou Domestos dilué au cinquième, eau distillée stérile.
– Flacon stérile (type petit pot de jus de fruit pour bébé) contenant le milieu de culture.
– Milieu de culture :
– agar (8 g/L),
– solution mère de KNOP,
– oligoéléments : pour 1 litre de solution mère :
– saccharose : 20 g/L de solution mère.
– matériel biologique stérile (scalpel et pinces enfermés dans du papier aluminium, boîte de Pétri).