A
| Extrait d’ acide cyanhydrique | Utilisation |
| Découper des feuilles de Laurier-Cerise (Prunus Lauro-Cerasus) en morceaux dans un mortier Broyer les feuilles dans un peu d’eau physiologique ou de tampon de respiration pour mitochondries Filtrer l’extrait qui contient de l’acide cyanhydrique libéré par hydrolyse et le broyage |
Blocage de la respiration mitochondriale Ex.A.O. |
| Agar-agar | Utilisation |
| solution à 1,4 % dans l’eau physiologique | remplissage des boîtes pour immunodiffusion |
| Albumine du blanc d’œuf | Utilisation |
| Diluer 1 blanc d’œuf dans 200 mL d’eau distillée. Chauffer doucement en agitant constamment ; vers 70°C, la solution prend un aspect laiteux par coagulation de l’ovalbumine. Arrêter aussitôt le chauffage et filtrer une fois. |
TP analyse de matière organique Électrophorèse de protéines |
C
| solvant Chromatographie des glucides | Utilisation |
| 60 % de méthyl-éthyl-cétone, 20 % d’acide acétique glacial, 20 % de méthanol. |
permet de réaliser la chromatographie des sucres sur gel de silice |
| révélateur Chromatographie des glucides | Utilisation |
| 1 volume de permanganate de potassium à 2 %, 1 volume de carbonate anhydre de sodium à 4%. |
permet de révéler la chromatographie des sucres mélanger les deux produits au dernier moment en ne préparant que les quantités nécessaires |
| solvant Chromatographie de l’acide lactique | Utilisation |
| butanol 1 : 1 volume additionné de bleu de bromophénol (jaune à pH<4,5), 1 g/litre de butanol acide acétique glacial : 0,5 volume eau distillée : 0,5 volume |
solvant de chromatographie de l’acide lactique et autres acides organiques |
E
| Eau physiologique | Utilisation |
| 9 g de NaCl pour 1000 mL d’eau distillée | multiples |
| Électrolyte pour sonde oxymétrique Schott | Utilisation |
| Na3PO4 à 50 g/L donc 1,5 g pour un flacon de 30 mL |
remplissage capsule de la sonde Schott utilisée par Jeulin et d’autres constructeurs |
G
| Globules rouges de mouton (=GRM) | Utilisation |
| Les hématies livrées (Biomérieux) sont à 50%. Réaliser une dilution à 2% soit 1 mL d’hématies pour 24 mL de tampon Véronal ou tampon PBS |
TP immunologie |
K
| Liquide de KNOP | Utilisation |
| Eau distillée 1000 g Nitrate de Ca 1 g Nitrate de K 0,25 g Phosphate de K 0,25 g Sulfate de Mg (ou sulfate de Ca) 0,25 g Phosphate de fer 0,1 g |
cultures hors-sol cultures algues unicellulaires cultures in-vitro |
M
| Milieu d’extraction des mitochondries | Utilisation |
| solution de phosphate monopotassique à 9,08 g de KH2PO4 par litre, solution de phosphate disodique à 9,47 g de Na2HPO4 par litre, mélanger 322 mL de la solution de phosphate disodique et 78 mL de la solution de phosphate monopotassique pour obtenir 400 mL de solution tampon à pH= 7,2, ajouter aux 400 mL, 800 mg de Sérum Albumine bovine (S.A.B.), ajouter enfin 45 g de mannitol et éventuellement 0,02 g de KCl et 0,02 g de MgCl2. |
milieu d’extraction des mitochondries de cœur de bœuf (par exemple) |
N
| Solution pour conservation nerf de crabe | Utilisation |
| 30 g de NaCl + 0,9 g de KCl + 1,9 g de CaCl2 + 4,19 g de NaHCO3 pour 1000 mL d’eau distillée NB : ce milieu peut être oxygéné. |
milieu de conservation du nerf de crabe |
P
| PBS | Utilisation |
| 7,65 g de NaCl, 0,724 g de Na2PO4 et 0,210 g de NaPO4 pour 1000 mL d’eau distillée |
lavages ou dilution de cellules |
R
| Réactif de Hill | Utilisation |
| 3,29 g de ferricyanure de potassium (K3[Fe(CN)6] dans 100 mL d’eau distillée | réaction de Hill à partir de chloroplastes isolés |
| Ringer | Utilisation |
| 6,5 g de NaCl + 0,25 g de KCl + 0,12 g de CaCl2 + 0,20 g de NaHCO3 | multiples |
| Rouge PONCEAU | Utilisation |
| Diluer le rouge Ponceau à raison de 13 mL pour 90 mL d’eau distillée | Coloration des bandes cellogel à électrophorèse. Coloration des dépôts d’immunodiffusion |
S
| Sérum pathologique (exemple) | Utilisation |
| Sérum humain reconstitué comme le LYOTROL N de Biomérieux Gammaglobulines antitétaniques sur ordonnance Ajouter à 1 mL de sérum Lyotrol N, 0,1 à 0,3 mL de gammaglobulines antitétaniques selon l’intensité de la tache d’Ig désirée |
Électrophorèse des protéines sériques |
| Solution zéro pour sonde oxymétrique | Utilisation |
| sulfite de sodium (Na2SO3) ou hyposulfite de sodium (Na2S2SO3) en solution saturée attention de conserver le flacon bien fermé et plein pour éviter l’oxydation NB : ajouter au fond du flacon des billes de verre au fur et à mesure qu’il se vide |
solution dite "zéro" permettant de régler le zéro des sondes à oxygène attention, ce produit est corrosif notamment l’hyposulfite |
| Solution de succinate de sodium | Utilisation |
| faire 10 mL à une concentration de 400 mmoles (acide succinique C4H6O4, PM=118 g), amener ensuite, au pHmètre, avec de la soude à 30%, l’acide succinique à pH=7,2. si l’on dispose de succinate de sodium, faire simplement une solution de succinate à 20 g/L (contrôler le pH et l’amener éventuellement à 7,2). |
substrat fonctionnel des mitochondries de cœur par exemple |
| Suspension de levures | Utilisation |
| oxygénée, pour respiration en Ex.A.O. : suspension à 5 g/l, à oxygéner au minimum 2 h avant le TP dans une éprouvette au fond de laquelle plonge un diffuseur d’aquarium aérant la suspension non oxygénée pour fermentation : suspension à 15 g/l |
respiration cellulaire, Ex.A.O. fermentation, Ex.A.O. |
T
| Tampon PBS (pH=7,2) | Utilisation |
| 7,65 g de NaCl + 0,724 g de Na2PO4 + 0,210 g de NaPO4 pour 1000 mL d’eau distillée |
dilution de l’agar-agar pour les boîtes test d’immunodiffusion |
| Tampon P-saccharose | Utilisation |
| 171 g de saccharose + 36,5 g de Na2HPO4 + 16,6 g de KH2PO4 pour 1000 mL d’eau distillée |
milieu d’extraction de chloroplastes ou de mitochondries végétales |
| Tampon TRIS-VERONAL | Utilisation |
| Diluer le TRIS VERONAL à raison de 10ml pour 90 mL d’eau. La solution se conserve un mois environ au réfrigérateur et se réutilise. |
Trempage des bandes cellogel à électrophorèse. Remplissage de la cuve à électrophorèse. |
V
| Vert de méthyl acétique | Utilisation |
| 1 g de vert de méthyl en poudre 55 mL d’eau distillée 45 mL d’acide acétique |
coloration des noyaux, des chromosomes et de l’ADN extrait des cellules |
